第一種：接種率測試

進行接種率測試可以優(yōu)化出一個最合適的血清使用濃度?？梢?/span>把新到批次的血清按不同的濃度比例配制成血清細胞培養(yǎng)基，例如5%、10%、15%和20%濃度的血清細胞培養(yǎng)基。然后以10-100個細胞/mL的濃度進行接種，并分別使用上述不同血清濃度的血清細胞培養(yǎng)基進行培養(yǎng)2周，觀察細胞的不同濃度下的細胞存活率以及細胞集落的面積變化，從而得出一個最合適的血清濃度。

例如，10%和15%的結(jié)果都可以接受的話，則應(yīng)使用10%進行培養(yǎng)，一方面可以節(jié)省血清使用，其次也可以降低血清存在時對細胞生長產(chǎn)生的其他不可控影響因素。

第二種：生長曲線

從生長曲線可以判斷不同批次間的血清對細胞生長的影響。以正常培養(yǎng)的濃度進行細胞接種，并觀察記錄細胞達到不同的密度所需要用到的時間。

例如，如果細胞使用這一批次的血清時，其生長停滯期的時間較長，說明細胞需要對這個批次的血清進行較長時間的適應(yīng)后才能正常生長；如果細胞進入指數(shù)增長期后，倍增速度快，也就是長得很快，說明這批次的血清對細胞的生長促進效果很明顯；如果細胞進入平臺期后，其密度比以往的血清批次要更高，說明該批次的血清的經(jīng)濟效率更高，反之亦然。

可以直接用MTT繪制細胞的生長曲線，也可以用可連續(xù)觀察的細胞計數(shù)儀或觀測系統(tǒng)。

第三種：細胞特征觀察

細胞特征觀察用于判斷該血清是否會存在一些影響因子，對細胞的基因表達產(chǎn)生影響。

這個實驗對藥物篩選、需要細胞定向分化或分泌物進行的項目非常有必要。

觀察細胞特征，除了要對細胞的形態(tài)特征進行判斷，還需要從分子和蛋白水平去檢測對比。

例如在正常培養(yǎng)階段，提取細胞RNA進行待研究的基因的表達分析，看看血清是否會對該基因的表達產(chǎn)生上調(diào)或抑制，如果有，那說明該血清的存在可能會影響你的課題實驗的結(jié)果準(zhǔn)確性。

第四種：血清污染物的檢測

通常商業(yè)化的血清出廠前都會進行嚴格的微生物清除，但仍有極少數(shù)可能有部分的血清會存在支原體的污染，或在實驗室進行血清分裝時帶入了微生物的污染。

因此，我建議，有條件的同學(xué)在使用血清前，應(yīng)該先取一點血清或已配制完成的血清細胞培養(yǎng)基進行空白培養(yǎng)，觀察其是否存在細菌、真菌等微生物的污染，確認沒有問題后再進行正式的細胞培養(yǎng)。

而支原體污染的風(fēng)險，則只能通過PCR、熒光染色等進一步的實驗方法進行檢測了。

這里還需要特別強調(diào)的一點是，有的同學(xué)會通過看血清的顏色是否紅、橙紅來判斷血清質(zhì)量，這是玄學(xué)，沒有科學(xué)依據(jù)。

血清的顏色如果較紅，代表其在采集過程中，動物出現(xiàn)了一定程度的溶血，這和采集工藝有關(guān)，和血清本身質(zhì)量無關(guān)。

另外，血清解凍后，有時會看到有一些絮狀物，這種絮狀物也不一定是微生物污染，有可能是血清內(nèi)的蛋白質(zhì)凝集而成的。

它的存在可能對細胞產(chǎn)生刺激，不利于細胞生長，但血清還是可以用的，這些絮狀物體積大無法通過過濾去除，我們可以嘗試離心完成清除后繼續(xù)使用該瓶血清。